Departamento de Química e Bioquímica Biologia Molecular 2013/2014
Enzimas que modificam o DNA Ana Carolina Cordeiro Rebeca Crespo Fiadeiro Docente: Margarida Amaral
Enzimas que modificam o DNA • • • • •
Nucleases Polimerases Ligases Nucleótido Transferases Enzimas que adicionam/removem grupos químicos – Metilases – Cinases – Fosfatases
Nucleases • Clivagem de ligações fosfodiéster entre nucleótidos Exonucleases
Endonucleases
Nucleases • Clivagem de ligações fosfodiéster entre nucleótidos Exonucleases Exonuclease III (E.Coli)
Bal31 (Alteromonas espejiana)
Nucleases • Clivagem de ligações fosfodiéster entre nucleótidos DNase I (pancrease da vaca)
Endonucleases
S1 Nuclease (Aspergillus oryzae)
Endonuclease de restrição
Nucleases – Engenharia Genética Zinc Finger Nuclease
Cys2His2 zinc finger
Proteína Zif268 constituído por 3 zinc fingers ligado ao DNA
Nucleases – Engenharia Genética Zinc Finger Nuclease Correcção genética por Recombinação homóloga mediada – terapia para doenças monogénicas
3 zinc fingers – reconhecimento
Fok1 (enzima de restrição) - clivagem
Polimerases • Síntese de nova cadeia complementar a uma cadeia de DNA molde
Polimerases Polimerase I (E.Coli) – Completa – 5’ 3’ polimerase – 3’ 5’ exonuclease (correcção de erros) – 5’ 3’ exonuclease (nick translation) Cadeia líder
Cadeia atrasada
Polimerases Polimerase I (E.Coli) – Completa – 5’ 3’ polimerase – 3’ 5’ exonuclease (correcção de erros) – 5’ 3’ exonuclease (nick translation)
Polimerases Polimerase I (E.Coli) – Completa – 5’ 3’ polimerase – 3’ 5’ exonuclease (correcção de erros) – 5’ 3’ exonuclease (nick translation) Remoção do RNA primer
Preenchimento de nicks
Polimerases – Engenharia Genética Sequenciação do DNA Fragmento Klenow – 5’ 3’ polimerase – 3’ 5’ exonuclease (correcção de erros) – 5’ 3’ exonuclease (nick translation)
Polimerases – Engenharia Genética Sequenciação do DNA 1. Clonagem do ssDNA a sequenciar no vector M13 2. Inserção do primer para permitir a ligação do DNA polimerase 3. Mistura reaccional: vector M13 + polimerase + 4 desoxinucleótidos + 1 didesoxinucleótido 4. Síntese de cadeias complementares
Polimerases – Engenharia Genética Sequenciação do DNA 5. Electroforese 6. Leitura
Polimerases – Engenharia Genética Sequenciação do DNA Escolha do Polimerase: Polimerase I : Actividade exonuclease 5’ 3’ Actividade exonuclease 3’ 5’ Fragmento Klenow : Actividade exonuclease 3’ 5’ Baixa eficiência (250bp) Sequenase : não contem actividade nuclease (Bacteriófago T7)
Polimerases – Engenharia Genética PCR e Thermal Cycle Sequencing Taq polimerase (Thermus Aquaticus): Enzima termostável – não sofre desnaturação a elevadas temperaturas PCR: Requer elevadas temperaturas para desnaturar o DNA – 94◦C Thermal Cycle Sequencing: Necessidade de amplificação de um gene método que une PCR com sequenciação do DNA
Polimerases – Engenharia Genética Clonagem de cDNA Transcriptase Reversa (replicação dos virus de RNA): Problema: mRNA não pode ser inserido num vector Solução: Conversão de mRNA a DNA por síntese de cDNA 1. Inserção do primer para permitir a ligação do Transcriptase Reversa 2. Síntese da cadeia de cDNA (molécula híbrida) 3. Degradação do RNA por um RNase H fragmentos de RNA servem de primers para o DNA polimerase I
Polimerases – Engenharia Genética Clonagem de cDNA 4. Síntese da cadeia complementar do cDNA resultando num dsDNA 5. Inserção da molecula dsDNA no vector 6. Clonagem
Ligases • Formação de ligações fosfodiéster entre nucleótidos Reparação de descontinuidades
Junção de duas moléculas DNA
Ligases – Engenharia Genética DNA recombinante Ligase: Responsável pela junção do vector e o DNA a clonar
DNA ligase utilizado em engenharia genética: E.coli infectado com fago T4 Mecanismo de acção do ligase
Ligases – Engenharia Genética DNA recombinante Blunt ends vs. Sticky ends
Ligases – Engenharia Genética DNA recombinante Síntese de Sticky ends 1. Linkers
Ligases – Engenharia Genética DNA recombinante Síntese de Sticky ends 2. Adaptadores
solução
Nucleótido Transferases • Adição de desoxirribonucleótidos ao terminal 3’-OH (extremidade ou nick)
Nucleótido Transferases – Engenharia Genética DNA recombinante Síntese de Sticky ends 3. Cauda de homopolímeros
Nucleótido Transferases – Engenharia Genética TUNEL
• TUNEL (Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling) : método para detectar fragmentação de DNA por apoptose
Célula apoptótica marcada com TUNEL
Adição/Remoção de Grupos DNA Cinase DNA Fosfatase
• PNKP (polynucleotide kinase/phophatase) é essencial à reparação de DNA danificificado por ROS. • Proximidade do mtDNA à cadeia respiratória e cadeia transportadora de e- mutações no mtDNA Diabetes, Cancro, Doenças neurodegenerativas, envelhecimento
Adição/Remoção de Grupos – Engenharia Genética DNA recombinante • Tratamento de vectores para não reciclizar sem inserção do gene a clonar
Adição/Remoção de Grupos DNA Metiltransferases
• Metilação em local específico
Me
C–G
• Modificação epigenética essencial • Alvos: – Promotores de genes : inactivação – DNA satélite : estabilização de centrómeros
Metilases de Grupos Adição/Remoção
eComoDNA as regiões não metiladas são mantidas? Metiltransferases Desmetilação
:
1
Se uma região do DNA não foi metilada, uma proteína específica reconhecerá as sequências não metiladas protege-a contra a metilação.
ssim que um local é metilado existem duas formas para o desmetilar:
2
• Bloquear a metilase de manutenção, proibindo-a de actuar no local aquando da replicação; • Desmetilar o local, removendo o grupo metil directamente da citosina ou extraíndo a citosina metilada;
Adição/Remoção de Grupos – Engenharia Genética Bisulfite sequencing + Footprinting Estudo do posicionamento nucleossomal utilizando DNA metiltransferases 1. Amplificação do promotor p16 por PCR 2. Tratamento de naked DNA (sem nucleossomas) com metiltransferase SssI (M.SssI) – Metilação de locais G 3. Tratamento de núcleos com M.SssI – Metilação apenas em locais íveis (sem nucleossomas) 4. Tratamento das duas linhas celulares com Bisulfite -bisulfite sequencing 5. Electroforese em gel - Footprinting
nucleossoma
Adição/Remoção de Grupos – Engenharia Genética Gene Silencing • Baixa [s-adenosilmetionina] Diminuição da metilação de promotores da expressão do gene da Amiloide β Sobrexpressão do gene Acumulação de Amiloide β Alzheimer • Tratamento: istração de s-adenosylmetionina
Bibliografia • • • • • •
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Klug Aaron, 2010, The Discovery of Zinc Fingers and Their Applications in Gene Regulation and Genome Manipulation, The Annual Review of Biochemistry, 79:21331 Jeltsch A.,2007, Application of DNA methyltransferases in targeted DNA methylation, Appl Microbiol Biotechnol, 75(6):1233-40 Tahbaz N.Subedi S., Weinfeld M., 2012, Role of polynucleotide kinase/phosphatase in mitochondrial DNA repair, Nucleic Acids Res., 40(8): 3484–3495 T.A.Brown (2006), Gene Cloning & DNA Analysis – An Introduction, 5ªEdição, blackwell publishing, Lewin B (2013) Genes XI Jones & Bartlett Publishers, Sudbury, Massachussetts, USA Mehrnaz Fatemi et. al, 2005,Footprinting of mammalian promoters: use of a G DNA methyltransferase revealing nucleosome positions at a single molecule level, Oxford Journals, Volume 33, Issue 20:176 Scarpa S, Cavallaro RA, D'Anselmi F, Fuso A, 2006, Gene silencing through methylation: an epigenetic intervention on Alzheimer disease, Journal of Alzheimer’s Disease, 9(4):407-14. http://www.piercenet.com/method/methods-labeling-nucleic-acids#tdt http://www.ppsk.usm.my/lecturers/mravi/PDF_FIles/Comenzymes.pdf