Makalah Kelompok 15 Fix 157129

MAKALAH RESEPTIR

MYCOPLASMOSIS PADA UNGGAS

Oleh: Kelompok 15 Akhmat Setya Bakti, SKH

B94174405

Ayu Rahmadani, SKH

B94174409

Rio Dejeneiro Manungkalit, SKH

B94174441

PROGRAM PENDIDIKAN PROFESI DOKTER HEWAN FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2018

2

MYCOPLASMOSIS PADA UNGGAS

Kelompok 15 Akhmat Setya Bakti, SKH

B94174405

Ayu Rahmadani, SKH

B94174409

Rio Dejeneiro Manungkalit, SKH

B94174441

4

1

PENDAHULUAN Latar Belakang Populasi ayam dari tahun ke tahun di Indonesia semakin meningkat walaupun banyak kendala yang sering dihadapi. Peningkatan tersebut dapat dilihat dari perkembangan mutu, tingkat produktivitas, hingga pengelolaan pemeliharaan ayam. Upaya untuk meningkatkan produktivitas ternak dan pengelolaan peternakan harus diterapkan secara optimal. Upaya tersebut meliputi pengelolaan kandang, pengelolaan pakan, dan pengelolaan kesehatan. Perkembangan populasi ayam dapat menurun karena masuknya bibit penyakit yang menyebabkan ayam sakit dan mati. Indonesia sebagai negara tropis merupakan tempat yang kondusif untuk perkembangan mikroorganisme. Oleh karena itu, perlu dilakukan pencegahan terhadap masuknya mikroorganisme patogen, seperti Mycoplasma, ke dalam wilayah peternakan. Menurut Songer dan Post (2005), Mycoplasma dapat ditemukan pada beberapa jenis hewan, seperti pada babi (Mycoplasma hyopneumoniae), pada sapi (Mycoplasma bovis), pada domba (Mycoplasma ovis), pada anjing (Mycoplasma haemocanis), dan pada kucing (Mycoplasma haemofelis). Beberapa spesies diantaranya dapat menyerang unggas, yaitu M. gallisepticum, M. synoviae, M. meleagridis dan M. Iowae. Selain hewan, Mycoplasma juga dapat menyerang manusia. Mycoplasma hominis adalah bakteri yang berasal dari daerah urogenital dan bersifat patogenik bagi manusia. Bakteri ini menyerang saluran pernapasan dan area urogenital. M. hominis pada wanita dapat menyebabkan radang tulang panggul, radang pada area genital bagian atas, kombinasi dari endometritis dan salpingitis, serta abses tuba ovarium. Penyakit radang tulang panggul pada pria lebih rendah dibanding pada wanita. Namun, M. hominis pada pria dapat menyebabkan kemandulan. Infeksi M. hominis pada bayi yang terlahir prematur dapat menyebabkan penyakit meningitis (Bonang et.al 1982). Mycoplasmosis yang menyerang unggas di Indonesia dapat disebabkan oleh Mycoplasma gallisepticum (MG) dan Mycoplasma synoviae (MS). MG dapat menyebabkan chronic respiratory disease (CRD). CRD merupakan salah satu penyakit yang menyerang sistem pernafasan pada unggas. Penyakit ini dapat menyerang semua umur ayam, tetapi lebih banyak menyerang ayam muda (OIE 2008). Penyebaran CRD tidak hanya pada ayam pembibit tetapi juga terjadi pada ayam komersial di seluruh Indonesia (Bayer 1987; Medion 1996; Soeripto 2000; Romindo 2007; BPPH 2007). Penyebaran infeksi MG dapat terjadi secara horizontal dan vertikal. Penyebaran secara horizontal dapat terjadi secara langsung melalui udara atau percikan air liur terhadap ayam di sekitarnya, sedangkan secara tidak langsung dapat melalui pakan, air minum, peralatan, dan pakaian pekerja yang terkontaminasi MG (Kleven 1990; Ley 2003). Penyebaran secara vertikal dapat terjadi melalui indung telur atau oviduk (Lin dan Kleven 1982). Gejala klinis bervariasi dari subklinis sampai kesulitan pernafasan tergantung dari derajat keparahan infeksi. CRD pada ayam merupakan penyakit yang sangat merugikan industri perunggasan di seluruh dunia.

2

Mycoplasma synoviae (MS) dapat menyebabkan synovitis yang infeksius. Umumnya, penyakit ini sulit diberantas pada peternakan yang telah terinfeksi oleh MS sekalipun sudah dilakukan pengobatan dengan antibiotik berulang kali (Stipkovits dan Kempf 1996). Infeksi ini dapat menyebabkan peradangan pada kantong membran udara (airsacculitis) jika terjadi kombinasi dengan infeksi Newcastle disease (ND) atau Infectious bronchitis (IB) atau keduanya (Kleven et al. 1972). Jika infeksi sudah sistemik maka dapat terjadi infeksi yang akut sampai kronik yang melibatkan persendian membrana synovial dan lapisan permukaan tendon (tendon sheath), dan menyebabkan synovitis eksudatif, tenovaginitis atau bursitis (OIE 2008). Angka morbiditas dengan gejala klinik bengkak sendi bervariasi antara 2  75%, sedangkan angka mortalitas berkisar antara 1  10%. Pada ayam percobaan, angka mortalitas tergantung pada rute inokulasi dan dosis inokulum (Kleven dan Noel 2008). MG dan MS dapat menyebabkan penyakit yang sangat merugikan industri peternakan unggas (Ley 2008; Kleven dan Noel 2008; Soeripto 2009). Kerugian di Indonesia mencapai ratusan milyar rupiah per tahun (Soeripto 2000) sedang di Amerika mencapai ratusan juta dolar per tahun (Vance et al. 2008). Kerugian ini meliputi menurunnya produksi telur, fertilitas, dan daya tetas dalam kisaran 8 – 30%, kematian embrio 5 – 20%, kematian anak ayam 5 – 10%, kenaikan berat badan terhambat 8 – 25%, serta konversi pakan naik (Kleven 1990). Oleh karena itu dibutuhkan terapi dengan obat yang tepat sehingga dapat mengurang angka kerugian akibat Mycoplasma.

Tujuan Makalah ini dibuat untuk memberikan informasi dan membuat resep pengobatan untuk penyakit yang disebabkan oleh M. gallisepticum dan M. synoviae pada unggas.

TINJAUAN PUSTAKA

Etiologi Mycoplasma gallisepticum (MG) dan Mycoplasma synoviae (MS) termasuk ke dalam kelas Mollicutes, ordo Mycoplasmatales, dan masuk ke dalam keluarga Mycoplasmataceae. Kedua spesies ini perlu lebih diperhatikan walaupun terdapat spesies lain seperti M. meleagridis and M. iowae yang dapat menyebabkan penyakit pada unggas. Organisme ini memiliki sel berukuran yang kecil, dengan diameter 200 – 800 nm (Kleven dan Noel 2008). Mycoplasma gallisepticum dan M. synoviae bersifat paling patogen dibanding spesies lainnya. Sel Mycoplasma tidak memiliki dinding sel, hanya dibatasi oleh membran sel yang tersusun atas tiga lapis lipoprotein. Oleh sebab itu, organisme ini resisten terhadap antibiotik yang bekerja pada dinding sel (Nascimento et al. 2005). Sel Mycoplasma dapat diwarnai dengan pewarnaan sederhana seperti Gram dan Giemsa. Bentuk sel bakteri ini adalah coccoid pleomorphic, sperikal, ovoid atau

3

seperti buah pir atau bulat dengan ribosom granular, sampai filamen bercabang dengan diameter sekitar 0,2 mikron (Bradbury 2001). Organisme ini tidak stabil pada pH ≤ 6,8 dan sensitif terhadap suhu lebih dari 39°C. Bakteri tersebut dapat bertahan hidup dalam kuning telur selama 7 tahun pada suhu -63°C, dan pada suhu -20°C dapat bertahan selama 2 tahun. Isolat dapat bertahan hidup selama 3 hari pada bulu ayam, sedang pada material seperti debu, pakan, air minum dan kotoran hanya bertahan selama satu hari. Masa inkubasi bervariasi antara 2 - 21 hari (Kleven dan Noel 2008). Koloni MG dan MS dapat dilihat pada Gambar 1.

a b Gambar 1 a) Koloni Mycoplasma gallinasepticum; b) koloni Mycoplasma synoviae (Uriarte et al. 2015)

Patogenesis Mycoplasma gallisepticum memilliki bentuk seperti botol atau filamen serta memiliki kutub (polartip) yang spesial, yang menghubungkan secara adhesi dengan sel inangnya (Kleven dan Noel 2008). Struktur ini merupakan kelompok yang kompleks dari protein interaktif, adhesin dan protein ini kaya akan proline yang mempengaruhi pembungkusan dan penyatuan protein-protein dimana hal itu penting untuk proses adhesi terhadap sel. Mycoplasma gallisepticum menempel pada permukaan sel yang bersilia dan yang non silia melalui sel mukosa. Beberapa Mycoplasma kekurangan struktur tip yang khusus, namun dapat menggunakan protein adhesinnya atau memiliki mekanisme alternative untuk menempel pada inangnya. Kejadian lanjut dari infeksi kurang diketahui dengan baik, tetapi ada beberapa faktor yang dapat diketahui yaitu; sitotoksisitas langsung melalui pembentukan hidrogen peroksida dan superoksida radikal, terjadi sitolisis yang dihubungkan oleh reaksi antigen-antibodi.

Epidemiologi Penyebaran penyakit ini hampir ditemukan diseluruh dunia, terutama di daerah yang beriklim tropis, wabah penyakit sering terjadi pada musim peralihan dari penghujan ke musim kemarau atau sebaliknya. Ayam yang sembuh dari sakit tahan terhadap feinfeksi sekuran-kurangnya untuk satu tahun. Penyakit ini dapat menyerang semua jenis ayam, baik ayam kampug, ayam petelur, dan ayam

4

potong/pedaging. Penyakit berjalan akut dan kadang-kadang kronis, dengan masa inkubasi 1-3 hari. Pada sekelompok ayam penyakit ini dapat berlangsung antara 13 bulan. Angka kematian umumnya rendah, yaitu antara 1-5% walaupun ada laporan sampai 30%, tetapi angka kesakitan dapat mencapai 80-100% (Ditjen PKH 2012). Penularan penyakit dapat terjadi melalui kontak langsung dengan ayam sakit atau ayam karier, tetapi dapat pula terjadi secara tidak langsung melalui air minum, pakan, dan peralatan yang terkontaminasi (Blackall et al. 1997). Infeksius Mycoplasma gallisepticum dapat menyerang ayam semua umur, tetapi yang paling peka adalah ayam umur 18-23 minggu atau menjelang bertelur. Jika terinfeksi, kelompok ayam ini akan sangat terlambat berproduksinya. Pada ayam yang sedang bertelur, penurunan produksi dapat mencapai 10-40 %, sedangkan pada ayam dara pengafkirannya (culling rate) dapat mencapai 20%. Kejadian Mycoplasmosis di Indonesia terjadi pada berbagai jenis ayam, seperti ayam kampong, ayam ras petelur, dan ayam ras pedaging. Berdasarkan data yang diperoleh dari hasil survey di kabupaten Bogor, Tangerang, Sukabumi, Bekasi, dan Cianjur diketahui bahwa dalam satu flok ayam petelur, angka kesakitan berkisar antara 30-40% dengan penurunan produksi telur antara 10—50 %, dan perjalanan penyakit berkisar antara 1-3 minggu. Setelah ayam-ayam tersebut sembuh dari sakit, produksi telur akan kembali normal (recovery) dalam waktu 1 bulan. Angka kesakitan seperti yang dilaporkan diatas, lebih rendah daripada angka kesakitan yang dilaporkan dalam penelitian sebelumnya yang berkisar antara 80100% (Gordon dan Jordan et al. 1982). Perbedaan ini kemungkinan karena sekarang ini para peternak dilapangan telah melakukan program vaksinasi secara teratur. Baik terhadap penyakit infeksius akibat Mycoplasma gallisepticum maupun untuk penyakit lain.

Diagnosis Diagnosis infeksi dapat dilakukan berdasarkan atas uji serologi, gejala klinik, perubahan patologi, serta isolasi dan identifikasi bakteri. Gejala klinik yang spesifik yaitu adanya kepincangan yang disebabkan oleh pembengkakan pada persendian lutut dan foodpads (Charlton et al. 2000). Uji serologi yang sederhana dan cepat dapat digunakan uji Rapid Serum Agglutination (RSA). Uji ini mudah dilakukan karena aglutinin yang terjadi dapat dilihat dalam waktu 2 menit setelah pencampuran antigen-antibodi, tetapi hasilnya tidak spesifik. Untuk lebih spesifik dapat digunakan uji Haemagglutination Inhibition (HI), dan Enzyme-linked Immunosorbent Assay (ELISA) (Hagen et al. 2002). Isolasi Mycoplasma pada kondisi akut lebih mudah dibandingkan dengan kondisi kronik, karena pada stadium kronik bakteri tidak lagi terdapat pada organ lesi. Dari pengalaman lapang yang selama ini dilakukan, kegagalan isolasi sering terjadi jika ayam yang terinfeksi telah diberi pengobatan dengan antibiotika. Sampel organ trakhea, kantong hawa, cairan eksudat persendian, hati atau limpa dapat digunakan untuk isolasi bakteri ini (Senties et al. 2005). Pengalaman lapang menunjukkan bahwa isolasi MS lebih mudah diperoleh dari cairan eksudat persendian dan pada kondisi akut. Identifikasi MS dapat

5

dilakukan dengan uji Indirect Fluorescent Antibody (IFA), Indirect Immunoperoxidase (IIP), dan Growth Inhibition (OIE 2008). Teknik identifikasi dengan analisis DNA spesifik yang menggunakan Polymerase Chain Reaction (PCR) saat ini banyak digunakan untuk diagnosis karena tingkat akurasinya lebih tinggi (Buim et al. 2009). Polymerase Chain Reaction merupakan teknologi yang sangat sensitif untuk mendeteksi adanya antigen infeksi sekalipun tanpa menunjukkan gejala klinik (Domanska et al. 2009).

Gejala Klinis Masa inkubasi infeksi Mycoplasma pada ayam bervariasi antara 2 – 21 hari (Charlton et al. 2000). Lama masa inkubasi dipengaruhi oleh kondisi lingkungan dan rute inokulasi Pada kondisi subklinik pada saluran pernafasan tidak terlihat gejala klinik yang muncul, kecuali terjadi infeksi sekunder dengan infeksi viral seperti ND dan IB maka terlihat gejala pernafasan dan pada pascamati ditemukan airsacculitis. Tanda-tanda klinis MG pada unggas dapat bervariasi dari subklinis untuk tanda-tanda pernapasan hingga gejala konjungtivitis, batuk dan bersin. Eksudat hidung dan bernapas dengan mulut juga dapat terjadi. Sinusitis sebagian atau bilateral juga mungkin terjadi termasuk sinus infraorbital mungkin menjadi sangat bengkak. Sinusitis, konjungtivitis dan adanya leleran hidung yang parah dapat membuat sayap menjadi kotor akibat dari usaha ihkan eksudat. Ayam jantan biasanya memperlihatkan gejala klinis yang lebih jelas (Ley 2003). Jika infeksi berlanjut dan disertai infeksi sekunder maka eksudat hidung yang keluar menjadi agak kental. Gejala pernafasan ini kemudian diikuti dengan turunnya nafsu makan, berat badan dan produksi telur, sedangkan konversi pakan naik (Mohammed et al. 1987).

Gambar 2 Gejala klinis infeksi M. gallisepticum, yaitu depresi dan juga rambut kusam pada ayam muda (Ditjen PKH 2012) Ayam dengan infeksi MS dapat menunjukkan jengger pucat, kepincangan dan pertumbuhan terhambat (Rishwain 2010). Predileksi awal adalah pada membran mukosa saluran pernafasan, tetapi setelah terjadi septisemia dapat bersarang pada membrana synovial dan tendon dari persendian, serta indung telur (Charlton et al. 2000). Pembengkakan dapat terjadi di sekitar sendi. Eksudat sendi kental, terlihat krim keabu-abuan dan berisi sejumlah besar asam urat. Eksudat tersebut ada di dalam sendi dan sepanjang selubung tendon. Selain itu sering terjadi hepatosplenomegaly dan berbintik-bintik, serta pembengkakan ginjal (Kleven dan Hofacre 2006). Pada kondisi ini biasanya ayam terlihat lesu, nafsu makan menurun

6

dan terlihat pincang jika berjalan. Jika berlanjut, terjadi depresi, anemia, kepucatan pada muka dan jengger, kekurusan yang berlanjut dengan kematian (OIE 2008).

Pengobatan Pengobatan mycoplasmosis baik yang disebabkan oleh M. gallisepticum atau M. synoviae dapat menggunakan antibiotik golongan tetracyclin (oxytetracyclin, chlortetracyclin, doxycycline), makrolida (tylosin, spiramycin, lincomycin dan kitasamysin), atau preparat quinolon (imequil, norfloxacin, enrofloxacin, danofloxacin) (Kleven dan Hofacre 2006). Tiamulin dilaporkan efektif untuk kontrol mycoplasmosis (Soeripto 2008). Mycoplasma diketahui resisten terhadap antibiotik yang mempunyai daya kerja menghambat sintesis dinding sel seperti golongan penicillin (Kleven dan Noel 2008). Selain pengobatan dengan antibiotik, terdapat senyawa herbal yang dapat digunakan. Hasil penelitian Mustika (2010) menunjukkan bahwa jahe memiliki sensitivitas terhadap M. gallisepticum. Jahe memiliki senyawa zingiberen dan fenol. Keduanya bersifat sebagai antimikroba. Senyawa zingiberen mampu mencegah terbentuknya membran sel pada M. gallisepticum, sedangkan fenol dapat mempengaruhi lisisnya membrane sel M. gallisepticum.

Pengendalian dan Pencegahan Ayam yang terinfeksi Mycoplasma akan menjadi karier untuk waktu yang lama, oleh karena itu perlu dilakukan upaya pengendalian agar tidak terjadi wabah yang merugikan (Amanu dan Sunuwihadi 2002). Mycoplasmosis pada daerah beriklim tropis, lebih sering muncul pada pergantian musim panas ke musim penghujan, sedang di iklim subtropis sering muncul pada musim dingin atau pada kondisi litter yang basah (Charlton et al. 2000). Usaha yang dilakukan untuk mencegah kejadian Mycoplasmosis adalah dengan perbaikan manajemen peternakan dan peningkatan biosecurity. Pelaksanaan higiene, sanitasi dan pemilihan bibit ayam unggul hanya yang berasal dari peternakan bebas CRD adalah hal yang wajib dilakukan. Pemerintah juga semestinya mengawasi melakukan pengawasan pada perusahaan pembibitan yang diatur oleh Direktorat Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan secara ketat khususnya mengenai penyakit (Soeripto 2000). Mycoplasma dapat ditularkan secara vertikal maka metode pengendalian yang efektif adalah mengusahakan dan menjaga agar ayam bibit maupun telur tetas bebas dari infeksi organisme tersebut (Aiello 2000). Untuk mendapatkan informasi mengenai gambaran tersebut dapat dilakukan dengan uji serologis secara berkala sehingga adanya infeksi dapat dimonitor (Usman dan Diarra 2008). Untuk menghilangkan faktor sumber infeksi perlu terus diupayakan tata laksana manajemen yang baik dan juga pengamatan biologis secara berkesinambungan. Pengendalian dengan cara vaksinasi dapat dilakukan walaupun belum memberikan hasil yang memuaskan. Sanitasi yang ketat pada breeding farm meliputi telur tetas dan inkubatornya dapat mencegah penularan organisme dari induk ke anak melalui telur.

7

Pencegahan dan kontrol infeksi dapat juga dilakukan dengan perendaman (dipping) telur berembrio dalam antibiotika sebelum ditetaskan (Nascimento et al. 2005; Kleven dan Noel 2008), walaupun program ini dapat menurunkan daya tetas telur (Usman dan Diarra 2008). Kontrol infeksi Mycoplasma dengan antibiotika yang dicampur dalam pakan (propilaksi) sudah merupakan hal yang rutin dilakukan pada peternakan ayam, sekalipun hasilnya masih belum memuaskan (Fiorentin et al. 2003). Kontrol Mycoplasmosis baik yang disebabkan oleh MG atau MS dapat juga menggunakan sistem all-in-all-out (Charlton et al. 2000). Sistem dapat dilakukan pada pemeliharaan ayam yang mempunyai umur seragam, tetapi sulit untuk dilaksanakan pada pemeliharaan ayam yang umurnya bervariasi (Soeripto 2009). Mycoplasmosis dapat kendalikan dengan biosekuriti yang ketat yang meliputi pengawasan terhadap lalu lintas ayam, produksi, pekerja dan staf kandang, peralatan, serta kendaraan yang masuk ke dalam kawasan peternakan. Dekontaminasi terhadap kandang, peralatan, pakaian pekerja, orang, serta kendaraan yang masuk wilayah peternakan harus diterapkan dengan ketat. Fumigasi harus dilakukan setelah kandang dipakai, dan bangkai ayam, telur, kotoran ternak serta pakan yang terkontaminasi infeksi harus dibakar atau dikubur (Soeripto 2009). Monitoring dengan uji serologi sebagai program kontrol untuk mencegah Mycoplasmosis baik untuk MG dan MS di Amerika sudah dilakukan secara rutin oleh United States Departement Of Agriculture (USDA) (Kleven 2005). Hal ini dilakukan karena Mycoplasmosis sudah dimasukkan ke dalam notifiable diseases yang harus segera dilaporkan ke pemerintah jika terjadi wabah (OIE 2007). Namun di Indonesia program ini masih belum diterapkan karena Mycoplasmosis pada ayam masih dianggap penyakit yang bukan prioritas, sekalipun kerugian yang ditimbulkan oleh infeksi Mycoplasma sangat tinggi (Soeripto 2000). Pencegahan dan kontrol Mycoplasmosis yang terbaik bukan dengan pengobatan tetapi dengan program vaksinasi. Tindakan vaksinasi selain dapat meningkatkan ketahanan tubuh ayam, juga dapat menghindarkan bakteri Mycoplasma dari resistensi terhadap antibiotika dan residu antibiotika di dalam produk ayam (Soeripto 2000). Vaksinasi dapat dilakukan dengan vaksin inaktif (tidak hidup) maupun vaksin aktif (hidup) (Whithear 1996). Vaksinasi biasanya digunakan untuk menghindari penurunan produksi telur pada peternakan ayam komersial, namun dapat juga dimanfaatkan untuk mengurangi tingkat penyebaran penyakit ini pada breeder. Vaksinasi penting dilaksanakan untuk mencegah infeksi. Vaksin inaktif terdiri dari suspensi Mycoplasma yang pekat pada emulsi minyak (Turner dan Kleven 1998). Vaksin inaktif secara subkutan untuk ayam dara pada umur 12-16 minggu, cukup dengan pemberian dosis tunggal dan untuk mencegah turunnya produksi.

PEMBAHASAN Kasus 1 (Stanley et al. 2001) Ayam berumur 46 minggu terinfeksi Mycoplasma gallisepticum (MG) dan Mycoplasma synoviae (MS). Gejala klinis yang muncul yaitu gangguan pada

8

saluran pernafasan dan anoreksia. Uji serologi dengan metode SPA (Serum Plate Agglutination) dan HI (Hemagglutinin Inhibition) menunjukkan hasil positif terhadap MG dan MS. Obat yang diberikan adalah enrofloxacin dengan dosis 10 mg/kg bb, diberi dalam air minum satu hari sekali selama 14 hari. Satu jam sebelum pemberian antibiotik, ayam dipuasakan dan air minum dikosongkan. Tiga jam setelah obat habis, air minum diisi kembali. Tabel 1 Tata laksana pengobatan Gejala Klinis

Obat

Dosis

Frekuensi Pemberian

Perhitungan

Antibiotik

Enrofloxacin

10 mg/kg (50ml untuk 100 ayam)

S 24 j, 14 hari

= 200 ayam : 1 flok/20 ayam = 10 flok = 10 flok x 5L/flok = 50L

Enrofloxacin merupakan antibiotik golongan fluorokuinolon. Mekanisme kerjanya dengan menghambat DNA gyrase pada bakteri sehingga sintesis DNA dan RNA bakteri terhambat. Enrofloxacin memiliki spektrum luas dan bersifat bakterisida. Hasil penggunaan enrofloxacin pada jurnal Stanley (2001) efektif terhadap MG namun kurang efektif terhadap MS. Menurut Stanley (2001), hal tersebut disebabkan oleh adanya resistensi MS saat dilakukan sensitivity test sehingga diperlukan adanya tes lebih lanjut mengenai efektivitas dari enrofloxacin terhadap MS. Resep penggunaan enrofloxacin pada kasus ini dapat dilihat pada Gambar 3. Poultry Veterinary Service Drh. Rio Alamat: Jalan Raya Leuwiliang, Bogor Jam Praktik: 15.00-22.00 WIB SIP: 94174/2017/2018 Bogor, 19 Juli 2018 R/ Enrofloxacin 10% sol. 100mg/ml No. XIV fls. s.1.dd. add. 50 L aq. pot. Paraf

Jenis: Ayam Breed: Layer Peternakan: Ciampea Alamat: Jalan Ciampea Timur, Bogor Gambar 3 Resep pengobatan mycoplasmosis dengan enrofloxacin

9

Kasus 2 (Catania et al. 2010) Peternak melaporkan adanya penurunan bobot telur dan abnormalitas pada telur ayam di suatu peternakan ayam layer. Terdapat 130.000 ekor ayam yang dibagi menjadi 3 flok yaitu flok 1, 2, dan 3. Penurunan bobot telur dan abnormalitas telur terjadi di flok 2 dan 3. Lesio yang terlihat pada telur ayam flok 2 dan 3 yaitu warna telur yang tidak merata, warna kehitaman pada apex telur, dan penipisan pada cangkang telur. Telur ayam di flok 1 dilaporkan tidak mengalami abnormalitas. Setelah dilakukan tes menggunakan sampel darah ayam dari tiap flok, ayam di flok 2 dan 3 positif terinfeksi M. synoviae. Pengobatan dilakukan dengan memberikan Tylosin dengan dosis 50 g/100liter air minum selama 5 hari di flok 3. Tidak dilakukan pemberian obat pada flok 1 karena tidak ada abnormalitas pada telur ayam. Tabel 2 Tata laksana pengobatan Gejala Klinis

Obat

Dosis

Frekuensi Pemberian

Perhitungan

Antibiotik

Tylosin

50g/100L

S 24 j, 14 hari

100g x 2L/1g = 200 L

Penggunaan tylosin pada kasus ini dapat meningkatkan bobot telur dan kualitas cangkang telur sehingga mengurangi kerugian ekonomi dari peternakan tersebut (Catania 2010). Tylosin merupakan antibiotik golongan makrolida yang bekerja dengan cara menghambat sintesis protein dari bakteri (Soeripto 2009). Pengobatan untuk mycoplasmosis yang disebabkan oleh M. synoviae dapat menggunakan antibiotic golongan tetrasiklin, makrolida, atau quinolone. Menurut Rachmawati dan Soeripto (2010), Mycoplasma resisten terhadap antibiotik yang mempunyai daya kerja menghambat sintesis dinding sel, seperti golongan penisillin. Resep pengobatan dapat dilihat pada Gambar 4. Poultry Veterinary Service Drh. Akhmat Alamat: Jalan Raya Ciampea, Bogor Jam Praktik: 15.00-22.00 WIB SIP: 94174/2017/2018 Bogor, 19 Juli 2018 R/ Tylosin pulv. 100 g No. V fls. s.1.dd. add. 200 L aq. pot. Paraf

Jenis: Ayam Breed: Layer Peternakan: Cikampak Alamat: Jalan Cikampak Dalam, Bogor Gambar 4 Resep pengobatan mycoplasmosis dengan tylosin

10

SIMPULAN Mycoplasmosis pada unggas di Indonesia disebabkan oleh Mycoplasma gallisepticum (MG) dan Mycoplasma synoviae (MS). MG menginfeksi ayam dan menyebabkan chronic respiratory disease (CRD), sedangkan MS menyebabkan synovitis infeksius. Keduanya menyebabkan kerugian bagi peternakan unggas di Indonesia. Pengobatan penyakit mycoplasmosis dilakukan dengan mencampurkan antibiotik golongan tetrasiklin, makrolida, atau quinolon, dengan air minum unggas.

DAFTAR PUSTAKA Aiello S. 2000. The Merck Veterinary Manual. Edisi ke-8. New York (US): White House Station. Amanu S, Sunuwihadi DR. 2005. Survei infeksi bakteri Mycoplasma synoviae pada kalkun, angsa, entok dan itik di Kabupaten Sleman, Daerah Istimewa Yogyakarta. J. Saint Vet. 23(2): 67 – 71. Bayer PT. 1987. Regularly occurring disease in the past 12 months in 1987. Jakarta (ID): PT Bayer Indonesia. Bonang, Gerrad, dan Enggar S. Koeswardono, 1982, Mikrobiologi Kedokteran untuk Laboratorium dan Klinik. Penerbit PT. Gramedia, Jakarta.Hal 29-30. [BPPH] Balai Penyelidikan Penyakit Hewan (ID). 2007. Data Diagnosa Penyakit pada Unggas. Informasi Laboratorium Balai Penyidikan Penyakit Hewan dan Balai Besar Veteriner seluruh Indonesia. Bradbury JM. (2001). Avian Mycoplasmas. In: Poultry Diseases, Fifth Edition. London (UK). 178–193. Buim MR, Mettifogo E, Timenetsky J, Kleven S, Ferreira AJP. 2009. Epidemiological survey on Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae by multiplex PCR in Commercial Poultry. Pesq. Vet. Bras. 29(7): 552 – 556. Catania S, Bilato D, Gobbo F, Granato A, Terregino C, Iob L, Nicholas RAJ. 2010. Treatment of eggshell abnormalities and reduced egg production caused by Mycoplasma synoviae infection. Avian Diseases. 54(2): 961-964. Charlton BR, Bermudes AJ, Boulianne M, Halvorson DA, Jeffrey JS, Newman LJ, Sander JE, Wakenell PS. 2000. Mycoplasma synoviae Infection (MS, Infectious synovitis; Tenovaginitis). Avian Diseases Manual. Fifth Edition. Pennsylvania (US): American Association of Avian Pathologists. [Ditjen PKH] Direktorat Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan. 2012. Manual Penyakit Hewan Mamalia. Jakarta (ID): Ditjen PKH. Domanska BK, Tomczyk G, Minta Z . 2009. Comparison Of different molecular methods for detection of Mycoplasma synoviae. Bull Vet. Pulawy. 53: 357 360. Fiorentin L, Soncini RA, Dacosta JL, Mores MA, Trevisol IM, Toda M, Vieira NA. 2003. Apparent eradication of Mycoplasma synoviae in broiler breeders

11

subjected to intensive antibiotic treatment directed to control escherichia coli. Avian pathol. 32: 213 – 216. Gordon RF, Jordan FTW. 1982. Poultry Disease, Second Edition. London (UK). 48-50. Hagen CA, Crupper SS, Applegate RD, Robel RJ. 2002. Prevalence of Mycoplasma antibodies in lesser prairie-chicken sera. Avian Dis. 46(3): 708 - 712 Hsu WH. 2008. Handbook Of Veterinary Pharmacology. Iowa (US): Blackwell Publishing. Jordan F, Pattison M, Alexander D, Faraghen T. 2001. Poultry Diseases Fifth Edition. London (UK): W.B. Saunders. Kleven SH, King DD, Anderson DP. 1972. Airsacculitis in broilers from Mycoplasma synoviae: Effect on airsac lesions of vaccinating with infectious bronchitis and Newcastle virus. Avian Dis. 16: 915  924. Kleven SH. 1990. Summary of discussions of avian Mycoplasma team. Avian Pathol. 19: 795 – 800. Kleven SH, Hofacre CL. 2006. Current implications in the field of MG and MS on broiler and laying hen production. The Poultry Informed Professional. 90: 1  5. Kleven SH, Noel NF. 2008. Diseases of Poultry 12th Edition. Iowa (US): Blackwell Publishing. Ley DH. 2003. Diseases of Poultry. 11th Ed. Iowa (US): Blackwell Publishing. Ley DH. 2008. Disease of Poultry. 12th ed. Iowa (US): Blackwell Publishing. Lin MY, Kleven SH. 1982. Egg transmission of two strains of Mycoplasma gallisepticum in chickens. Avian Dis. 26: 487 – 495. Lukert PD, Saif YM. 2003. Infectious Bursal Disease. Dalam: Saif YM, Barnes HJ, Glisson JR. (eds) Diseases of Poultry: Eleventh Edition. Iowa (US): University Press. [Medion]. 1996. Upaya pengembangan produk biologik bidang kesehatan hewan melalui kemitraan di Indonesia. PT Medion Indonesia. Bogor, Des. 1996. Mohammed HO, Carpenter TE, Yamamoto R.. 1987. Economic impact of Mycoplasma gallisepticum and M. synoviae in commercial layer flocks. Avian Dis. 31: 477 – 482. Mustika AA. 2010. Potensi jahe, kencur, temulawak, dan sambiloto sebagai anti Mycoplasma gallisepticum dan Escherichia coli penyebab chronic respiratory diseases [disertasi]. Bogor (ID): IPB. Nascimento ER, Pereira VLA. Nascimento MGF, Barreto MI. 2005. Avian mycoplamosis update. Brazillian J. Poult. Sci. 7(1): 1 – 9. [OIE] Office International des Epizooties (FR). 2008. Avian Mycoplasmosis (Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma sinoviae). OIE terrestrial manual 2008. Chapter 2.3.4. 482-496. Quinn PJ, Markey BK, Carter ME, Donnelly WJC, Leonard FC and Maghire D 2002. Veterinary Microbiology and Microbial Disease. Melbourne (AUS): Blackwell Science Ltd. Rachmawati F, Soeripto. 2010. Infeksi Mycoplasma synoviae pada ayam. Wartazoa. 20(4): 153-160. [Romindo]. 2007. Pengamatan penyakit bakterial pada unggas di Indonesia dalam kurun waktu tahun 2004 – 2006. Jakarta (ID): PT Romindo Primavetcom.

12

Senties CG, Shivaprasad HL, Chin RP. 2005. Systemic Mycoplasma synoviae Infection in Broiler Chicken. Avian Pathology. 34(2): 137 - 142. Shankar BP. 2008. Common respiratory disease of poultry. Veterinary World Review. Vol. 1(7): 217-219. Soeripto. 2000. Penyakit pernafasan menahun pada ayam. Kumpulan Makalah Poultry Refresher Course. Bogor, April 2000. hlm. 42 – 53. Soeripto. 2008. Efikasi Tiamulin hydrogen fumarat 10% pada pakan untuk pencegahan chronic respiratory diseases pada ayam potong. JITV 13(1): 67 – 73. Soeripto. 2009. Chronic respiratory disease (CRD) pada ayam. Wartazoa. 19(3): 135  143. Songer JG, Post KW. 2005. Veterinary Microbiology “Bacterial and Fungal Agents of Animal Disease”. Beijing (CN): Saunders Elsevier. Stanley WA, Hofacre CL, Speksnijder G, Kleven SH, Aggrey SE. 2001. Monitoring Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae infection in breeder chickens after treatment with enrofloxacin. Avian Diseases. 45(2): 534-539. Stipkovits L, Kempf I. 1996. Mycoplasmosis in poultry. Revue scientifique et technique. Off. Epizoot. 15(4): 1495  525. Uriarte J, Cerda R, Stanchi N. 2015. Chicken erythrocyte invasion capability of a Mycoplasma synoviae strain isolated in Argentina. AnalectaVet. 35(2): 2124. Usman BA, Diarra SS. 2008. Prevalent diseases and mortality in egg type layers: an overview. Int. J. Poult. Sci. 7(4): 304 - 310. Vance A, Branton S, Collier S, Gerald P, Peebles E. 2008. Effects of prelay ts11strain Mycoplasma gallisepticum inoculation and time specific F-strain Mycoplasma gallisepticum inoculation overlays on internal egg and eggshell characteristics of commercial laying hens. Poult. Sci. 87: 1358 – 1363.