Panduan Sterilisasi 593z56

DINAS KESEHATAN KABUPATEN TABALONG

PUSKESMAS UPAU Alamat : Jalan Raya Pangelak RT.3 No. 1 Kecamatan Upau Kode Pos 71575 Email : [email protected]

BAB I

PENDAHULUAN

Sterilisasi dan desinfeksi merupakan salah satu kegiatan pengendalian infeksi nosokomial yang mempunyai peran dan tanggung jawab yang tinggi dalam menekan kejadian infeksi di Puskesmas. Puskesmas sebagai institusi penyedia pelayanan kesehatan berupaya untuk mencegah resiko terjadinya infeksi bagi pasien dan petugas Puskesmas. Salah satu indikator keberhasilan dalam pelayanan Puskesmas adalah rendahnya angka infeksi nosokomial dari Puskesmas. Untuk mencapai keberhasilan tersebut maka perlu dilakukan pengendalian infeksi di Puskesmas. Dengan demikian maka perlu dilakukan proses sterilisasi dan desinfeksi terhadap bahan dan alat-alat sesuai prinsip-prinsip yang benar dan sesuai Standar Operating Prosedur yang ditetapkan merupakan cara terbaik bagi petugas untuk mencegah terjadinya penyebaran penyakit dan penularan penyakit infeksi Maka dari itu pedoman sterilisasi dan desinfeksi yang baik sangat diperlukan sebagai pedoman dalam memberikan pelayanan sterilisasi dan desinfeksi, untuk mengadakan pengawasan dan konrol mutu terhadap hasil sterilisasi dan desinfeksi, dan sebagai sebuah panduan kerja bagi tenaga pelaksana dalam memberikan pelayanan sterilisasi dan desinfeksi di Puskesmas.

BAB II

STERILISASI

1. Pengertian

Sterilisasi adalah suatu proses dengan metode tertentu yang memberikan hasil akhir suatu bentuk keadaan dimana tidak dapat ditunjukan lagi adanya mikroorganisme hidup. Proses sterilisasi di Puskesmas sangat penting sekali dalam rangka pengawasan dan pencegahan infeksi nosokomial. Keberhasilan usaha tersebut akan tercermin pada kualitas dan kuantitas mikroorganisme yang terdapat bahan, alat serta lingkungan kerja Puskesmas. Sebaiknya proses sterilisasi di Puskesmas dilaksanakan secara sentralisasi dengan tujuan agar tercapainya : a. b. c. d. e.

Efisiensi dalam menggunakan peralatan dan sarana. Efisiensi tenaga. Menghemat biaya investasi, instalasi dan pemeliharaannya. Sterilisasi bahan dan alat yang disterilkan dapat dipertanggungjawabkan. Penyederhanaan dalam pengembangan prosedur kerja, standarisasi dan peningkatan pengawasan mutu.

Unit kerja yang bertanggung jawab terhadap proses sterilisasi Puskesmas adalah Instalasi Sterilisasi sentral. Instalasi Sterilisasi Sentral mempunyai kegiatan mengelola semua kebutuhan peralatan dan perlengkapan tindakan bedah serta non bedah. Mulai dari penerimaan, pengadaan, pencucian, pengawasan, pemberian tanda steril, penyusunan dan pengeluaran barang-barang hasil sterilisasi ke unit pemakai di Puskesmas.

2. Tehnik Sterilisasi

Sebelum memilih tehnik sterilisasi yang tepat da efisien diperlukan pemahaman terhadap kemungkinan adanya kontaminasi dari bahan dan alat yang akan disterilkan. Kontaminasi terjadi karena adanya perpindahan mikroorganisme yang berasal dari berbagai macam sumber kontaminasi. Sumber kontaminasi dapat berasal dari : a. b. c. d. e. f.

Udara yang lembab atau uap air. Perlengkapan dan peralatan di Puskesmas. Personalia yang di rumah sakit (kulit, tangan, rambut dan saluran nafas yang terinfeksi) Air yang tidak disuling dan tidak disterilkan. Ruang yang tidak dibersihkan dan didesinfektan. Pasien yang telah terinfeki. Sterilisasi dimaksudkan untuk membunuh atau memisahkan semua mikroorganisme, ditentukan oleh daya tahan mikroorganisme terhadap tehnik sterilisasi. Tehnik sterilisasi ada beberapa cara :

a. Sterilisasi dengan pemanasan :  Pemanasan basah dengan Autoklaf.  Pemanasan kering dengan pemijaran dan udara panas.  Pemanasan dengan baktericid b. Sterilisasi dengan penyaringan. c. Sterilisasi dengan menggunakan zat kimia. d. Sterilisasi dengan penyinaran. 3. Pemilihan Tehnik Sterilisasi Berdasarkan Pertimbangan a. Tehnik yang murah, cepat dan sederhana. b. Hasil yang diperoleh benar-benar steril. c. Bahan yang disterilkan tidak boleh mengalami perubahan. 4. Pengawasan Suatu bahan steril yang dihasilkan selama proses dalam penggunaan harus dapat dijamin kualitas dan kuantitasnya. Waktu kadaluarsa suatu bahan steril sangat tergantung kepada tehnik sterilisasi. Pengawasan terhadap proses sterilisasi dapat dilakukan dengan cara mentest bahan atau alat yang dianggap masih steril dengan memakai indikator fisika, kimia dan biologi tergantung pada tehnik sterilisasi yang digunakan waktu mensterilisasikan bahan/alat tersebut. 5. Pengujian Ada tiga pilihan yang dapat digunakan sebagai tehnik dalam pengujian sterilitas : a. Pemanasan sample langsung pada media pembenihan. b. Pembilasan penyaringan, hasil pembilasan diinkubasikan setelah ditanam dalam media pembenihan. c. Penambahan media pembenihan paket kedalam larutan yang akan diuji kemudian diinkubasi.

Jaminan hasil pengujian dapat dicapai jika pengawasan dimulai semenjak pemilihan bahan dan alat yang akan disterilkan. Tehnik sterilisasi yang akan dipakai sampai dengan proses penyimpanan dan pendistribusian bahan/alat yang sudah steril.

BAB III

DESINFEKSI

1. Pengertian

Desinfeksi adalah suatu proses baik secara kimia atau secara fisika dimana bahan yang patogenik atau mikroba yang menyebabkan penyakit dihancurkan dengan suatu desinfeksi dan antiseptik. Desinfektan adalah senyawa atau zat yang bebas dari infeksi yang umumnya berupa zat kimia yang dapat membunuh kuman penyakit atau mikroorganisme yang membahayakan, menginaktifkan virus. Antiseptik adalah zat-zat yang dapat membunuh atau menghambat pertumbuhan mikroorganisme pada jaringan hidup. Unit kerja yang bertanggung jawab menyediakan desinfektan dan antiseptik di Puskesmas adalah Instalasi Farmasi. Instalasi Farmasi mempunyai kegiatan mulai dari perencanaan, pengadaan, pembuatan, penyusunan dan penyaluran desinfektan/antiseptik ke unit pemakai di Puskesmas.

2. Tehnik Desinfeksi Tehnik desinfeksi yang dilakukan tidak mutlak bebas dari mikroorganisme hidup seperti pada sterilisasi Karena desinfektan/antiseptik tidak menghasilkan sterilitas. Pemilihan desinfektan yang tepat seharusnya memenuhi kriteria sebagai berikut : a. b. c. d. e. f. g. h.

Daya bunuh kuman yang tinggi dengan toksisitas yang rendah. Spektrum luas, dapat mematikan berbagai macam mikroorganisme. Dalam waktu singkat dapat mendesinfektan dengan baik. Stabil selama dalam penyimpanan. Tidak merusak bahan yang didesinfeksi. Tidak mengeluarkan bau yang mengganggu. Desinfektannya sederhana dan tidak sulit pemakaiannya. Biaya murah dan persediaan tetap ada dipasaran. Faktor yang mempengaruhi pemilihan desinfektan yaitu sifat-sifat zat kimia yang akan digunakan seperti konsentrasi, temperature, pH dan bentuk formulasinya disamping itu kepekaan mikroorganisme terhadap kerja zat kimia serta lingkungan dimana desinfektan tersebut akan digunakan.

Macam-macam desinfektan yang dapat dipakai dalam tehnik desinfeksi digolongkan berdasarkan struktur kimia senyawa : a. Fenol atau asam karbonat. b. Alkohol/Etanol.

c. d. e. f. g. h.

Aldehid (glutaraldehid dan formaldehid) Biguanida (klorheksidin glukonat atau asetat) Amonium Kuartener (benzalkonium klorida) Halogen (hipoklorit, povidon yodium) Logam berat (merkuri klorida) Oksidator (hidrogen peroksida)

3. Pengawasan Desinfeksi Pengawasan desinfeksi dilakukan terhadap penggunaan desinfektan dan jumlah kontaminasi sebelumnya. Karena hasil desinfeksi sangat tergantung kepada pengaruh suhu, pencemaran, pH, aktifitas permukaan, jumlah mikroorganisme dan adanya zat-zat lain yang mengganggu pada waktu mempergunakan desinfektan.

BAB IV

PENUTUP

Sterilisasi dan desinfeksi mempunyai peran dan tanggung jawab yang tinngi dalam upaya mencegah terjadinya penyebaran/penularan penyakit infeksi pada pasien yang dirawat di Puskesmas sehubungan dengan bahan dan alat-alat instrument yang dipakai. Melakukan proses sterilisasi dan desinfeksi terhadap bahan dan alat-alat sesuai prinsipprinsip yang benar dan sesuai Standar Operating Prosedur yang ditetapkan merupakan cara terbaik bagi petugas untuk mencegah terjadinya penyebaran penyakit dan penularan penyakit infeksi. Peningkatan mutu pekayanan sterilisasi dan desinfeksi akan meningkatkan pula mutu pelayanan kesehatan secara keseluruhan di Puskesmas Upau.

Ditetapkan di Pada tanggal

: Upau :

2018

KEPALA PUSKESMAS UPAU

DENNIE

LAMPIRAN

1. PENGELOLAAN BAHAN ATAU ALAT STERIL

A. Pengemasan

Pengemasan dilakukan terhadap bearang bersih dan kering, artinya dilakukan dekontaminasi, pencucian dan pengeringan terlebih dahulu. Bahan yang digunakan sebagai pengemas harus mempunyai sifat permeabel (dapat ditembus oleh uap air/uap panas), tipis, elastis, dan tidak mudah sobek. Sebagai pengemas digunakan : 1. Kertas perkamen rangkap dua untuk kasa dan sarung tangan. 2. Kain katun/linen untuk instrumen, tenun operasi, sarung tangan. 3. Tromol stainless yang mempunyai bagian yang dapat dibuka tutp untuk aliran uap untuk pengemasan instrument, tenun, kasa, dan sarung tangan. B. Penandaan atau Pengetiketan Penandaan atau pemberian etiket harus dilakukan terhadap masing-masing bungkusan yang siap untuk disterilkan. Etiket dan label harus mencantumkan : 1. Nama dan jenis barang. 2. tanggal penyeterilan. C. Penyimpanan Barang-barang yang telah disterilkan sebaiknya disimpan dalam ruangan steril atau clean room. Apabila kondisi tersebut tak dapat dicapai maka setidaknya barang harus disimpan di ruangan/tempat yang bersih dengan kondisi : 1. 2. 3. 4. 5.

Kering dan tidak lembab. Bebas dari debu. Bebes dari serangga. Dilengkapi dengan lampu UV. Dilengkapi dengan AC (Air Conditioner) dan pengukur kelembaban.

D. Distribusi Pendistribusian barang steril ke ruangan-ruangan harus dapat menjamin bahwa barang tersebut tetap steril sampai ruangan. Untuk itu dalam pendistribusiannya harus menggunakan wadah yang bersih, kering, tertutup dan kedap udara (missal kantong plastik yang tertutup). Sangat dianjurkan dalam pendistribusiannya digunakan tromol-tromol stainless steel yang memang dirancang untuk penyimpanan barang steril. Dalam pendistribusiannya digunakan system FIFO (First In First Out).

E. Kontrol Kualitas Produk akhir dari hasil sterilisasi adalah barang steril, untuk itu perlu dilakukan beberapa tahap dan cara kontrol kualitas : 1. In Proses Kontrol Artinya adalah bahwa dapat dipastikan seluruh prosedur dekontaminasi, pencucian, pengeringan, pengemasan, penyeterilan, penyimpanan dan pendistribusian barang telah dilakukan sesuai dan tidak menyimpang dari prosedur yang telah ditetapkan. 2. Kotrol Kualitas secara Visual Kontrol kualitas dengan cara melihat bentuk dan keadaan fisik barang. Bila terdapat kerusakan pada pembungkus atau adanya perubahan fisik barang maka barang tersebut tidak dapat digunakan lagi atau harus dikemas dan disteril ulang. 3. Kontrol Kualitas dengan Menggunakan Indikator Kontrol kualitas menggunakan indikator dimaksudkan untuk mengontrol bahwa suatu barang telah melalui proses sterilisasi yang sempurna, namun belum menunjukan bahwa barang tersebut telah bebas dari mikroorganisme (steril) Ada 2 jenis indikator untuk kontrol kualitas proses sterilisasi : 

Indikator Fisika : Indikator ini menunjukan keadaan alat sterilisasi (autoklaf) berfungsi dengan baik atau tidak. Untuk sterilisasi dengan autoklaf indikator tersebut berupa grafik yang menunjukan suhu dan tekanan yang mencerminkan bahwa proses sterilisasi berjalan sempurna.



Indikator Kimia : Penggunaan bahan kimia sebagai indikator berdasarkan pada terjadinya perubahan warna karena adanya panas, gas, atau radiasi. Autoklaf tape (Bowie disk paper) yang berwarna kuning muda dan garis miring berwarna lebih muda jika terkena panas dari autoklaf, garis miring tersebut telah berubah warna menjadi coklat sampai hitam. Tape inipun dapat berfungsi label dan pengikat.

Bila indikator diatas tak menunjukan nilai atau perubahan yang semestinya berarti proses sterilisasi tak sempurna maka perlu dilakukan sterilisasi ulang.

4. Kontrol Kualitas untuk Pengujian Steril Untuk pengujian sterilisasi perlu dilakukan pengujian secara mikrobiologi dari barang yang telah disterilkan. Prosedur :  



Lakukan sampling dari barang yang disterilkan pada hari itu, masing-masing satu dari tiap jenis barang. Sampling dilakukan dengan cara mengambil barang yang letaknya ditengah autoklaf pada saat proses sterilisasi, ambil satu dari masing-masing jenis barang yang masih dikemas dengan baik. Pada hasil sampling tadi dilakukan uji sterilitas dengan penanaman sampel pada media pembenihan (proses pengujian dapat dilakukan dengan mengirim sampel pada bagian patologi klinik).



Karena pengujian ini membutuhkan waktu 1-2 hari, dianjurkan uji sterilitas ini dilakukan tiap 2 minggu sekali.

5. Waktu Kadaluarsa Barang yang telah disterilisasi mempunyai waktu kadaluarsa. Untuk barang steril yang kemasan dan bentuknya tidak menunjukan adanya kerusakan atau perubahan selama masa penyimpanan maka waktu kadaluarsanya adalah 2X24 jam. Bila dalam waktu 2X24 jam barang tersebut belum dipakai maka perlu dilakukan sterilisasi ulang. 2. PENGGUNAAN DESINFEKTAN/ANTI SEPTIK

N o 1

2

3

Desinfektan/ antiseptik Povidon - Iod

Povidon-Iod Scrub

Klorheksidin glukonat 1,6% + setrimid 15%

Kegunaan

Potensi aktivitas

- Desinfeksi sebelum dan sesudah operasi - Pengobatan dan pencegahan pada infeksi kulit yang disebabkan bakteri, jamur, virus dan protozoa. - Kompres pada lukaluka bernanah. - Mencegah timbulnya infeksi pada-luka

Membunuh :

- Cuci tangan rutin. - Cuci tangan sebelum operasi

Membunuh :

- Bakteri gran positf - Bakteri gram negatif - Jamur - Virus (HIV pada konsentrasi ≥ 0,5%) - Spora - Protozoa

- Bakteri gram positif - Bakteri gram negatif - Jamur - Virus (HIV pada konsentrasi ≥ 0,5%) - Protozoa - Spora

- desinfeksi luka bakar Membunuh : dan luka pasca bedah - bakteri gram - desinfeksi kulit positif - (pengusapan pada (10µg/ml) kebidanan dan - bakteri gram urologi) negatif

Toksisitan - reaksi hipersensivitas lokal jarang terjadi, pada penderita yang sensitf tidak digunakan - Decubitus ulcer dapat terjadi pada penderita usia lanjut karena absorbsi sistemik setelah penggunaan topikal - reaksi hipersensivitas lokal jarang terjadi, pada penderita yang sensitf tidak digunakan

- sensitivitas kontak dan fotosensitivitas rendah pada penggunaan jangka lama. Tidak diabsorbsi melalui

- cuci tangan di bangsal perawatan - desinfeksi darurat alat/i9nstrumen - desinfeksi dan penyimpanan instrumen

(60µg/ml) pada kulit pH 5-8 - Larutan pekat - virus (HIV pada klorheksidin dapat konsentrasi ≥ menybabkan iritasi 0,2%) konjunctiva dan jaringan yang sensitif lainnya - Kadang-kadang terjadi reaksi dan reaksi hipersensitif terhadap setrimid (jarang) - Sesekali dapat terjadi reaksi speriil terbakar karena larutan strimid yang pekat

4

Klorheksidin asetat

- Irigasi kandung Membunuh : - sangat rendah baik kemih secara oral maupun bakteri gram - Desinfeksi instrumen secara lokal positif termasuk endoskopi - karena sifat iritasi, (10µg/ml) - Desinfeksi luka dan hindarkan kontak bakteri gram irigasi mata dengan otak, negatif selaput otak dan (60µg/ml) pada telinga tengah pH 5-8 - pada konsentrasi - virus (HIV pada yang lazim dipakai konsentrasi ≥ tidak merangsang 0,2%) kulit

5

Klorheksidin glukonat 4%

- cuci tanganrutim - cuci tangan sebelum operasi - desinfeksi kulit sebelum pembedahan

Glutaral dehida 2%

- Desinfeksi dan sterilisasi - Instrumen bedah danendoskopi - Alat plastik dan

6

Membunuh :

- kadang-kadang terjadi reaksi iritasi pada kulit - reaksi alergi yang menyeluruhterhada p klorheksidin pernah dilaporkan tetapi jarang terjadi

- bakteri gram positif (100g/ml) - bakteri gram negatif (600g/ml) pada pH 5-8 - virus (HIV pada konsentrasi ≥ 0,2%) Membunuh : - Bakteri gran positf - Bakteri gram

korosif iritasi dermatitis dan cenasilitasi

-

7

Picioxidinedigluco nate 0,5% + octylphenoxypoly ethoxythanol 5,5% + benzalkonlumklori da 6,0%

karet Peralatan anestesi Peralatan saluran pernafasan Peralatan gigi Alat-alat yang tidak dapat disterilkan dengan cara panas

-

negatif M. Tuberculose Spora Virus Glutaral dehida 2% pH 7,6-8,5 efektif membunuh bakteri < 2 menit,m. Tuberculose pungsi dan alsaridium spesiasis dalam 3-10 jam

Desinfeksi kulit :

Membunuh :

- sebelum operasi - pembersih sebelum dan sesudah melahirkan - pembilasan tangan Desinfeksi peralatan dan perlengkapan :

- Bakteri gran positf - Bakteri gram negatif - Virus (Tilchophyca, aspergillus, candida albicane) - Virus (Influenza, Herpez Simplex, Variolla dan lain-lain

- desinfeksi semua jenis instrumen : kateter (bukan dari karet), cutgut, benang sutera dan lain-lain - stestokop - mesin anestetik (+ tubing) - alat dialtalis - alat-alatuntuk keperluan ”emergency” - penyimpanan alat Ruangan : - desinfeksi dinding dan lantai - desinfeksi udara

- Benzalkonlumklori da pada mata menyebabkan iritasi dan gangguan penglihatan - Larutan pekat benzalkonlumklorid a menyebabkan korosif pada kulit yang luka dan bekas luka

3. CUCI TANGAN Hygiene tangan merupakan cara yang paling efektif untuk mematahkan mata rantai infeksi. Oleh karena itu perlu diketahui tehnik yang sederhana tentang cuci tangan 1. Siapa yang harus cuci tangan ? Setiap petugas yang langsung kontak dengan pasien, bertanggung jawab untuk mencegah penyebaran kuman pathogen, dan diharuskan cuci tangan dengan seksama. 2. Kapan waktu yang tepat untuk cuci tangan ?  Pada waktu tiba di Puskesmas, untuk mencegah terbawanya kuman dari luar Puskesmas.  Sebelum masuk ruang rawat dan sesudah meninggalkan ruang rawat.  Sebelum dan sesudah melaksanakan tindakan keperawatan kepada pasien.  Sebelum dan sesudah memberikan obat-obatan atau makanan kepada pasien.  Jika tangan tampak kotor.  Sebelum dan sesudah minum/makan.  Sebelum pulang ke rumah.  Setelah petugas dari kamar kecil. 3. Bagaimana cara cuci tangan yang baik ? Cuci tangan biasa/rutin :  Dengan menggunakan air bersih dan mengalir.  Dengan menggunakan sabun.  Sela-sela jari tangan, kuku harus dibersihkan.  Membilas dengan air bersih dan mengalir sampai bersih.  Kemudian dilap dengan menggunakan lap kering (lap sekali pakai) 4. Cuci tangan untuk pembedahan (surgical scrub)  Lepaskan semua perhiasan yang ada di tangan (gelang, cincin)  Menggunakan air bersih dan mengalir serta menggunakan antiseptic atau antimikroba.  Tangan dibasahi sampai siku.  Mulai tangan kiri disikat kuku, sela jari, tapak tangan 5 kali, punggung tangan 5 kali, setiap sisi lengan bawah sampai siku 5 kali, hingga bersih. Ganti tangan kanan kerjakan yang serupa berulang- ulang sampai sepuluh menit.  Tangan dibilas dengan air bersih yang mengalir dengan posisi jari tangan lebih tinggi dari posisi siku.  Dihindarkan tangan yang sudah dicuci tersentuh benda sekkitarnya.  Lamanya cuci tangan lebih lama dari cuci tangan biasa/rutin

4. ISOLASI A. Pengertian Isolasi Isolasi adalah usaha pencegahan penularan/penyebaran kuman pathogen dari sumber infeksi (petugas pasien, karier, pengunjung) ke orang lain. B. Syarat Kamar Isolasi 1) Lingkungan harus tenang. 2) Sirkulasi udara harus cukup. 3) Penerangan harus cukup baik. 4) Bentuk ruangan sedemikian rupa sehinnga memudahkan untuk observasi pasien dan pembersihannya. 5) Tersedia WC dan kamar mandi. 6) Kebersihan lingkungan harus dijaga.

7) Tempat sampah harus tertutup. 8) Bebas dari serangga. 9) Tempat alat tenun kotor harus tertutup. 10) Urinal dan pispot untuk pasien harus dicuci bersih dengan memakai desinfektan. C. Petugas yang Bertugas di Kamar Isolasi 1) Harus sehat. 2) Mengetahui prinsip aseptic/antiseptic. 3) Pakaian rapid an bersih. 4) Tidak memakai perhiasan. 5) Kuku harus pendek. 6) Cuci tangan sebelum masuk kamar isolasi. 7) Pergunakan barrier nursing seperti pakaian khusus, topi, masker, sarung tangan dan sandal khusus. 8) Cuci tangan sebelum dan sesudah kontak dengan pasien. 9) Berbicar seperlunya. 10) Lepaskan barrier nursing sebelum keluar kamar isolasi. 11) Cuci tangan sebelum meninggalkan kamar isolasi. D. Alat 1) Alat dibutuhkan tersedia. 2) Selalu dalam keadaan steril. 3) Dari bahan yang mudah dibersihkan. 4) Alat suntik bekas dibuang pada tempat tertutup dan dimusnahkan. 5) Alat yang tidak habis pakai dicuci dan disterilkan kembali. 6) Alat tenun bekas dimasukkan kedalam tempat tertutup. E. Jenis Isolasi Jenis isolasi yang dilakukan sesuai dengan patogenitas kuman dan cara penularannya/penyebarannya. 1)

Isolasi ketat. Tujuan isolasi ketat adalah mencegah penyebaran semua penyakit yang sangat menular, baik melalui kontak langsung maupun peredaran udara. Teknik ini mengharuskan pasien berada dikamar tersendiri dan petugas yang berhubungan dengan pasien harus memakai pakaian khusus, masker dan sarung tangan serta mematuhi aturan pencegahan yang ketat misalnya pada pasien penyakit cacar, difteri, atau infeksi Staphylococcus Aureus karena luka bakar.

2)

Isolasi saluran pernafasan. Tujuannya untuk mencegah penyebaran pathogen dari saluran pernafasan dengan cara kontak langsung dan peredaran udara. Cara ini mengharuskan pasien dalam kamar terpisah, memakai masker dan dilakukan tindakan pencegahan khusus terhadap buangan nafas/sputum, misalnya pada pasien pertusis, campak, tuberkulosis paru, haemophillus influenzae.

3)

Isolasi enterik. Tujuannya untuk mencegah infeksi oleh pathogen yang berjangkit karena kontak langsungdan atau tidak langsung dengan buangan dubur/tinja yang mengandung kuman penyakit menular. Pasien ini dapat bersama dengan pasien lain dalam satu kamar, tetapi dicegah kontaminasi silang melalui mulut dan dubur. Misalnya pada pasien kolera, salmonellosis, shigellosis, dysentri amuba, enterokolitis karena staphylococcus.

4)

Isolasi luka dan kulit. Tujuannya untuk mencegah infeksi oleh pathogen yang disebarkan karena kontak langsung dengan luka, kulit dan atau benda yang terkontaminasi dengan pasien. Pasien ini lebih baik ditempatkan di kamar tersendiri. Petugas yang berhubungan langsung harus memakai harus memakai pakaian khusus, masker dan sarung tangan, tindakan pencegahan khusus harus dilakukan pada waktu penggantian balutan. Misalnya pada pasien dengan gas gangrene, pes dan infeksi kulit yang menyeluruh/luka bakar.

5)

Isolasi proteksi. Tujuannya untuk mencegah kontak antara pathogen yang berbahaya dengan orang yang daya rentannya semakin besar, atau melindungi seseorang tertentu terhadap semua jenis pathogen, yang biasanya dapat dilawannya. Pasien harus ditempatkan dalam suatu lingkungan yang mempermudah terlaksananya tindakan pencegahan yang perlu. Misalnya pada pasien leukemia, sedang menjalani pengobatan immunosupresif.

6)

Tindakan pencegahan terhadap buangan tubuh. Tujuannya untuk mencegah infeksi oleh pathogen yang disebarkan karena kontak langsung dengan sekresi, ekskresi, dan atau benda yang terkontaminasi. Misalnya pada pasien gonore, scarlet fever.

7)

Tindakan pencegahan terhadap darah dan cairan tubuh. Tujuannya mencegah penularan oleh organisme yang disebarkan karena kontak dengan darah, cairan tubuh dan atau benda terkontaminasi. Tindakan khusus dilakukan terhadap jarum dan semprit yang terkontaminasi. Misalnya pada pasien hepatitis, dan AIDS.

F. Lama Isolasi Lama isolasi tergantung pada jenis penyakit, kuman penyebab dan fasilitas laboratorium, yaitu : 1) 2) 3) 4)

Sampai biakan negatif. Sampai penyakit sembuh (khusus untuk luka atau penyakit kulit sampai tidak mengeluarkan bahan menular) Selama pasien dirawat di ruang rawat. Sampai 24 jam setelah dimulai pemberian antibiotika yang efektif.

5. MASKER A. Syarat masker yang baik Masker terbuat dari kain kasa, minimal lima lapis dengan tali pengikat yang cukup. B. Cara memakai masker  Memasang masker sambil bercermin, sehingga terpasang dengan tepat yaitu ditengah dan benar-benar menutupi hidung dan mulut.  Tali diikatkan cukup kuat.  Satu masker untuk satu kali pemakaian.  Bila menjadi lembab masker diganti

6. CARA PENGAMBILAN, PENYIMPANAN, PENGIRIMAN BAHAN UNTUK PEMERIKSAAN MIKROBIOLOGI A. Persyaratan Agar kuman pathogen dapatdiisolasi, maka jenis bahan pemeriksaan, cara pengambilan, waktu pengambilan, penyimpanan dan pengiriman bahan ke laboratorium harus setepat-tepatnya. Diasmping itu harus disertakan keterangan tentang keadaan pasien dan penggunaan antibiotika.

B. Jenis Bahan Pemeriksaan Jenis bahan pemeriksaan yang diambil tergantung dari kuman pathogen yang akan diisolasi. Misalnya untuk N. Gonorrhoe dari seorang wanita. Bahan pemeriksaan yang paling baik adalah hapus servik dan bukan vagina. Demikian pula untuk isolasi kuman pathogen paru-paru, bahannya adalah dahak dan bukan ludah. C. Waktu Pengambilan Waktu yang terbaik untuk urine dan dahak segera bangun tidur pagi karena kumannya telah cukup waktu untuk berkembang biak. Untuk bahan darah biasanya waktu yang terbaik adalah pada saat permulaan suhu badan pasien meningkat. Untuk sebagian besar bahan pemeriksaan, waktu pengambilan tergantung dari keadaan pasien dari perjanjian antara klinikus, perawat, dan laboratorium. Harus diusahakan agar setiap bahan pemeriksaan diambil sebelum pemberian obat antimikroba. Tetapi apabila antimikroba telah diberikan supaya diberi keterangan tentang jenis antimikroba, dosis dan lamanya pemberian. D. Teknik Pengambilanbahan Bahan pemeriksaan dari tempat yang biasanya steril seperti darah, urine, liquor atau cairan efusi harus diambil dengan cara aseptic. Cara aseptic ini adalah untuk menghindari kontaminasi tetapi juga untuk melindungi pasien. Kapas lidi yang dipergunakan untuk mengambil bahan pemeriksaan harus steril dan tidak mengandung bahan antibakteri. Untuk bahan tinja dan dahak, wadah bersih cukup, tidak perlu (steril) E. Label Pada Pemeriksaan Dan Surat Permohonan Pemeriksaan 1) Setiap bahan pemeriksaan harus dilabel yang jelas dengan nama pasien, nomor, ruang perawatan. 2) Surat permohonan pemeriksaan harus tercantum :  Nama, umur, nomor dokumen medik, dan ruang perawatan.  Jenis bahan pemeriksaan, tanggal dan waktu pengambilan.  Pemeriksaan yang diinginkan.  Keterangan klinik, diagnosis kerja, dan pengobatan antimikroba. F. Penyimpanan dan Media Transport untuk Bahan Pemeriksaan 1) Umumnys berlaku ketentuan bahwa pengiriman bahn pemeriksaan ke laboratorium secepat-cepatnya. Dengan demikian dapat dijamin bahwa kuman pathogen masih tetap hidup setibanya di laboratorium. 2) Apabila terjadi keterlambatan didalam pengiriman maka harus digunakan bahan pengawet kimia atau medium transport. Hal akan mencegah kuman oleh enzim sendiri, perubahan pH atau kekurangan makanan Contoh media transport : 

Amies atau Stuart untuk bahan pemeriksaanyang diambil dengan lidi kapas atau untuk N. Gonorrhoe.  Carry Blair untuk tinja. Cotoh pengawet kimia :   

Asam borat untuk urine. Cetyl pyridium chlorida NaCi untuk dahak. Bahan pemeriksaan juga dapat disimpan dalam suhu 4-10˚C untuk mempertahankan hidup kuman Neiseria, S.Pneumoniae dan Haemophillus yang akan mati pada suhu rendah. G. Detail Pengambilan, Penyimpanan dan Pengiriman Bahan Pameriksaan

1)

2)

3)

4)

5)

6)

Urine  Saluran kemih biasanya steril, kecuali urethra yang mengandung kuman komensal seperti Acinetobacter dan Diphteroid. Saluran urethra wanita dapat juga ditemukan ragi.  Pada waktu pengambilan dapat terjadi kontaminasi dari kulit dengan kuman staphylococcus, diphteroid, dan M. Segmentis.  Pada pasien wanita dapat terjadi kontaminasi dengan flora normal vagina.  Kontaminasi pada urine wanita dapat diketahui dengan adanya sel epitel atau kuman campuran.  Bahan urine dikumpulkan secara urine porsi tengah, pungsi suprapubik atau kateter.  Jumlah urine kira-kira 20 ml atau kurang untuk anak atau pasien payah ginjal.  Segera dikirim ke laboratorium dan dismpan 4˚C 20 jam atau tambah asam borat 1%. Darah  Darah selalu steril dan keadaan normal.  Darah diambil secara dengan semprit steril sebanyak kira-kira 10 ml.  Ganti jarum steril baru sbelum dimasukkan kedalam medium : tryptone soya diphasic medium dan thioglicollate broth dengan perbandingan bahan : medium adalah 1 : 10, dieramkan pada suhu 30˚C. Nanah  Dapat diambil dari ulkus atau abses.  Apabila dari abses, pengambilan dilakukan secara aspirasi dengan semprit steril dan tutup ujung jarum dengan tutup botol karet atau bengkokoan jarum, dikirim langsung ke laboratorium dal;am waktu 1 jam.  Apabila dari ulkus, nanah diambil dengan kapas lidi steril secara aseptic lalu dimasukkan ke dalam media transport segera kirim ke laboratorium. Tinja  Bahan diambil pada saat diare akut.  Jumlah yang diambil kira-kira satu sendok makan yang mengandung mucus, nanah, atau darah.  Tempat penampungan cukup kalau bersih tidak perlu steril  Apabila tidak ada tinja dapat diambil dengan kapas lidi dari rectum dan dimasukkan kedalam media transport. Dahak  Bahan yang terbaik adalah dahak pagi sewaktu bangun tidur.  Untuk anak kecil yang tidak dapat mengeluarkan dahak dapat diambil dari cairan lambung (khusus untuk isolasi M. Tuberkulosis)  Dahak dapat pula diambil secara aspirasi melalui endotrakheal tube atau transtrakheal.  Bahan ditampung didalam wadah steril yang langsung dikirim ke laboratorium.  Perhatikan apabila tersangka kuman penyebab S. Pneumonia atau H. Influenzae maka bahan tidak boleh disimpan pada suhu 4˚C. Liquor Cerebrospinalis  Dalam keadaan normal bahan liquor adalah steril.  Bahan harus diperiksa secepat-cepatnya karena penundaan pemeriksaan akan menguirangi keberhasilan isolasi.  Pengambilan melalui pungti lumbal harus seaseptik-aseptiknya.  Jumlah bahan cukup 1-2 ml untuk kultur dan 2-3 ml untuk pemeriksaan lainnya.

H. Pengambilan Bahan Pemeriksaan dari Barang-barang Lingkungan 1) Kateter Intravena



2) 3)

4)

5)

Gunting ujung kateter dan masukkan secara aseptic kedalam botol heart infusion (BHI)  Langsung dikirim ke laboratorium. Endotrakheal  Gunting ujungnya dan masukkan kedalam kaldu BHI secara aseptik. Pressure Monitoring Devices  Bilas kira-kira 20 mlcairan infus steril.  Atau bilas dengan kapas lidi yang telah dibasahi dengan BHI steril untuk kultur diafragma. Alat Lain  Kapas lidi steril yang telah dibasahi dengan BHI steril.  Kirim segera ke laboratorium. Darah atau Cairan Infus  Ambil 20 ml secara aseptic.  Masukkan kedalam medium.  TSB diphasic medium.  Thioglycoliate broth.  Perbandingan 1 : 10 (bahan : medium)

Operasi bersih :  Operasi pada kasus non trauma  Operasi yang tak mengenal daerah dengan tanda inflamasi.  Operasi yang tak membuka tr. digestivus, tr. respiratorius, tr. urinarius.  Umumnya luka operasi ditutup primer dan tak dipasang dren. Operasi bersih tercemar :      

Operasi membuka tr. digestivus, tanpa pencemaran nyata. Operasi membuka tr. billaris tanpa ada empedu yang infeksi. Operasi membuka tr. urinarius tanpa ada urine yang terinfeksi. Operasi membuka tr. respiratorius tanpa ada infeksi tr. urinarius. Operasi membuka saluran genitalis wanita. Umumnya operasi ditutup primer dan tak dipasang dren.

Operasi tercemar :     

Operasi membuka tr. digestivus, dengan pencemaran nyata. Operasi membuka tr. billaris dengan empedu yang terinfeksi. Operasi membuka tr. urinarius dengan urine yang terinfeksi. Operasi membuka tr. respiratorius dengan infeksi respiratorius. Operasi pada luka karena trauma yang bersi dan kurang dari 6 jam.

Operasi kotor :   

Operasi perforasi tr. digestivus, tr. respiratorius, tr. urinarius, billaris. Operasi yang mengenai daerah inflamasi bacterial. Operasi melalui daerah bersih untuk membuka abses.



Operasi luka trauma dengan ada jaringan yang non vital/benda asing/kontaminasi faeses, kejadian ditempat yang kotor, pertolongan/operasi dilakukan 6 jam setelah trauma.

7. PROSEDUR OPTIMAL UNTUK PEMEMASANGAN (INSERVASI DAN PEMELIHARAAN) INTRAVENA Tindakan :  

     

     



Cuci tangan dengan sabun, dengan air mengalir, atau dalam larutan lodoform sedikitnya 2 menit. Gunakan kain alas dan sarung tangan yang steril a. Pada insersi kam\nula sentral yang memerlukan vena seksi. b. Terutama pada orang dewasa, pilih lengan dari pada tungkai, kanula yang dipasang pada tungkai pindahkan secepatnya pada lengan. c. Pada anak batasi intravena. Bila tempat IV berambut, janga dicukur tapi digunting rambut tersebut. Tempat IV disiapkan dengan antiseptic, dengan efekktivitas antibiotic yang unggul seperti suatu apusan larutan lodoform atau Tinctur Iodium (1-2 %) Apusan digosokkan dengan gerakan melingkar dimulai dari titik pusat keluar kepinggir yang cukup luas. Dalam hal tidak tahan terhadap preparat Iodium, dapat dipakai penggodokan dengan alcohol 70 % sedikitnya satu menit. Pada vena seksi dapat diberikan salep antibiotika yang berspektrum luas pada tempat tusukan jarum kateter. Tempatkan alas steril 2 X 2 cm dibawah bagian jarum yang menjulur. Tempat alas serupa menututpi tempat insersi dan rekat dengan plester yang kedap air. Hindarkan balutuan yang berlebihan. Kanula atau kateter harus benar-benar terfiksir. Tanggal, waktu, macam dan ukuran jarum kanul IV harus dicatat dalam catatan perawat dan dibubuhkan juga data tersebut pada plester yang menjamin tetap steril. Awasi (pantau) tiap hari akan kemungkinan penyulit lain pada pemasangan IV. Caranya antara lain : palpitasi hati-hati tempat insersi jarum melalui balutan/tutup yang utuh. Tempat insersi IV harus dipantau, phlebitis, infiltrasi dan sumbatan atau kebocoran jarum atau selang pada : tiap mengganti tutup/balut dan tiap mengganti botol. Scara aseotik penggantian tutup/bslut harus diganti tiap 24-48 jam dan bila tutp/balut basah atau dicurigai terkontaminasi. Mengganti set a. Ganti seluruh set IV meliputi botol IV sampai jarum atau kateter, tiap (72jam) baik cairan elektrolit maupun nutrisi parenteral. b. Ganti seluruh set juga sesudah tranfusi darah atau unsure-unsur darah atau emulsi lipid. Mengganti tempat IV Dilakukan tiap 48-72 jam. Kateter atau kanul tidak boleh tinggal ditempat lebih dari 72 jam.

 

Memasang obat-obatan dan lain-lain kedalam selang dan botol harus melalui gerbanggerbang injeksi yang telah didesinfeksi sebelum dimasukkan. Irigasi maupun sepul selang untuk memperbaiki aliran harus dihindarkan.

   



 

Bahan pemeriksaan darah tidak boleh disedot dari selang IV, kecuali dalam keadaan darurat atau bila infuse kemudian akan dihentikan. Botol cairan infus harus diteliti secara rutin terhadap retak-retak bocor dan kekeruhan. Botol yang tidak vakum waktu dibuka jangan dipakai. Tiap botol harus diberi label yang jelas dengan nama OS. Obat-obatan yang ditambahkan dan waktu dibuka. Bila dicurigai bakterimia atau tromboflebitis purulen yang disebabkan set infuse (botol, selang, jarum) yang terkontaminasi seluruh set harus dipindahkan secara aseptic dan dikirim ke laboratorium klinik untuk dibiakan: a. Secara aseptic, jarum atau kanul harus ditempatkan dalam wadah yang steril dan dikirim ke laboratorium klinik untuk dibiakan kuantitatif. b. Cairan botol harus dibiakan dan botol diamankan. c. Bila cairan tersebut terbukti tercemar maka botol yang bersangkutan dan seluruh persediaan botol-botol yang sejenis harus diamankan dan nomor dari isi botol dan obatobatan yang diberkan harus dicatat. Kepala Puskesmas Teluk Tiram segera melaporkan ke Dirjen Makanan dan Obat-obatan, Dep. Kes jika didapatkan pencemaran cairan infuse yang diduga terjadi pada saat pembuiatan. Semua jenis cairan parenteral yang sudah mulai diberikan harus diinfuskan dalam jangka waktu 24 jam atau dibuang. Infus dengan emulsi lipid harus diselesaikan dalam 12 jam sesudah dimulai Anak-anak : a. Hindarkan pemasangan IV pada bayi. b. Pakai wing needle.